O uso de marcadores fluorescentes e o acoplamento ao microscópio de uma câmera de vídeo ou de um dispositivo de captura de imagens do tipo charge-coupled device, associados a um sistema computacional de digitalização e análise de imagens, permite a análise quantitativa de alterações em proteínas de membrana, referidas no texto, que ocorram ao longo do tempo.

Um microscópio de campo escuro, diferente do mostrado na figura, requer uma fonte de iluminação acima da amostra, para que apenas a luz refletida pelo espécime seja captada pela objetiva.

A microscopia de campo escuro não pode ser aplicada às células mencionadas no texto, pois não é uma técnica de microscopia de transmissão de luz.

Caso duas amostras contidas em duas preparações distintas sejam comparadas em um microscópio de contraste de fase, a espessura do espécime não interfere na diferença do caminho óptico, que gera o contraste entre a imagem do espécime e a do fundo.

Se for realizada uma análise de células vivas, na ausência de pigmentos e corantes, é correto considerar o uso de um microscópio de contraste de fase, que utiliza a difração da luz no espécime.

No microscópio em apreço, o aumento do contraste causa um aumento da resolução, em toda a faixa de contraste e resolução do microscópio.

Para que os fenômenos de difração e interferência possam ser observados, são necessários acessórios especiais ao microscópio, não-descritos no texto nem mostrados na figura.

A inclusão de ascorbato em preparações para análise de células vivas é uma medida eficaz contra o dano por radicais livres.

Caso seja necessário analisar células vivas, o sistema de iluminação deve ser capaz de fornecer comprimentos de onda próximos de 546 nm, o que reduz danos por radicais conseqüentes à exposição a comprimentos de onda menores e danos por aquecimento a comprimentos de onda maiores.

O microscópio referido no texto utiliza luz colimada nos segmentos entre o condensador e a ocular.