O uso do xilol determina o endurecimento dos tecidos, o que permite um melhor corte, utilizando-se resinas em lugar da parafina.

A diafanização é um método que permite a transparência dos tecidos submetidos à imersão no xileno, facilitando-lhes a fixação.

Uma característica macroscópica dos tecidos que sofreram fixação alcoólica é a degradação do sangue, perdendo a cor vermelha ou sanguinolenta observada a fresco.

O fixador de Zenker é mercurial e tem como principal propriedade fixar bem os núcleos das células, o que permite uma melhor visualização microscópica.

O fixador de Bouin usa o ácido pícrico como um dos componentes, o que permite fixação mais prolongada dos tecidos, como nas biópsias de agulha, podendo-se ultrapassar 24 horas de fixação, sem prejuízo do exame histológico.

A fixação com o etanol absoluto determina secções de tecidos, que se fragmentam na microtomia em parafina.

Cada tecido humano apresenta um grau de penetração do fixador dependente da sua estrutura histológica.

Na preparação da solução de formalina a 10%, o formol utilizado não tem concentração comercial de 100%.

As secções de tecidos obtidas na clivagem das amostras dos tecidos, após fixação, devem ter uma espessura média entre 30 e 50mm, permitindo uma boa penetração das substâncias usadas na técnica histológica.

O álcool etílico 99,5º pode ser utilizado como um fixador de tecidos por ser pouco desidratante, preservando as estruturas celulares ou tissulares.